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當前位置:首頁技術文章改善RNA提取的4點建議

改善RNA提取的4點建議

更新時間:2013-07-29點擊次數(shù):1581

加利福尼亞州科學院(California Academy of Sciences)的Jack Dumbacher博士目前正開展轉錄組和小RNA的分離,以便鑒定宏基因組病毒序列。他的研究目標是了解病毒與宿主的共生關系。Dumbacher博士為改善RNA提取提出了幾點建議。

優(yōu)化RNA的保存

研究小組常常從偏遠地區(qū)采集樣本,如熱帶雨林或珊瑚礁。他們的大挑戰(zhàn)在于無法用液氮迅速冷凍樣本,而RNA在乙醇中逐步降解。于是,他們用拭子蘸取鳥的泄殖腔,并放在RNA穩(wěn)定劑或其他包含4M 硫氰酸胍(GITC)的溶液中。由于鹽的濃度,一些RNA穩(wěn)定劑可能會給RNA的分離造成困難。當然,如果能解決冷藏問題,保存RNA的好辦法是采集后立即用液氮冷凍樣本,并保存在-80°C。
確保良好的分離
GITC溶液通常用于RNA提取中細胞和病毒顆粒的裂解,同時防止RNase的酶活。在這種情況下,研究小組必須在裂解之前進行完整病毒的分離,以便與細胞分開。在現(xiàn)場,他們用0.2 µm的過濾器來過濾較小的病毒顆粒。而較大的顆粒(如完整細胞)則被留下。其他實驗室若使用冷凍的組織樣本,則必須快速*地勻漿。無論選擇哪種方法,始終會有些基因組(gDNA)存在。具體有多少則在很大程度上取決于用戶的經(jīng)驗和技術。

盡量避免RNase

在實驗室中,避免已純化的RNA接觸到內(nèi)源和外源的RNase關重要。在純化開始時,外源RNase不怎么成為威脅。但在沒有了變性劑(如GITC)的保護以及RNA純化完成后,你就要避免接觸RNase。RNase抑制劑隔離殘留的RNase,適合大部分應用,特別是那些包含內(nèi)源RNase的應用。科學院的比較基因組實驗室使用經(jīng)DEPC處理的水。DEPC通過堿基的組氨酸修飾而讓RNase失活。同時記住,及時更換手套。

提高RNA的產(chǎn)量

不同組織不同樣本的RNA產(chǎn)量會相差很大。對于Dumbacher博士而言,每個樣本的RNA量都很低。他們所獲得的RNA量取決于小鳥后一次進食的時間,吃了什么。Dumbacher小組的下游應用是新一代測序。他認為,即使樣品的RNA含量很低,但在構建文庫以及獲得終結果時還是會覺得不錯。
若要提高組織樣本的RNA產(chǎn)量,避免過度勻漿或加熱。勻漿30秒,再休息30秒,可改善RNA的回收。同時,用更多的水洗脫可釋放更多RNA。無論您的實驗室采用何種下游技術,成功的分析都取決于良好的RNA分離技術。孰巧,多試試一定行。

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