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當(dāng)前位置:首頁(yè)技術(shù)文章干貨|免疫組化的成功經(jīng)驗(yàn)和失敗教訓(xùn),看這篇就夠了!

干貨|免疫組化的成功經(jīng)驗(yàn)和失敗教訓(xùn),看這篇就夠了!

更新時(shí)間:2019-08-02點(diǎn)擊次數(shù):5924

 

 

復(fù)雜的石蠟制片,繁瑣的脫蠟染色讓實(shí)驗(yàn)的菜鳥(niǎo)們對(duì)免疫組化實(shí)驗(yàn)望而卻步。每每做IHC時(shí),每一步都小心翼翼,精益求精,等待掃描結(jié)果時(shí),內(nèi)心總是獨(dú)白:“你已經(jīng)是一個(gè)成熟而的切片了,該展示你的精彩了”。但理想是美好的,現(xiàn)實(shí)是骨感的,總會(huì)遇到各種“疑難雜癥”,實(shí)驗(yàn)還是得繼續(xù)摸索。究竟如何得到的免疫組化實(shí)驗(yàn)結(jié)果,索萊寶為您歸納總結(jié)了一些常見(jiàn)問(wèn)題和實(shí)驗(yàn)小技巧。

 

  免疫組化(IHC)知識(shí)大講堂  

 

 

石蠟切片在染色過(guò)程中出現(xiàn)脫片現(xiàn)象怎么回事?

1)有些組織本身就容易掉片,如骨組織等,操作時(shí)沖PBS不要直接沖到組織上,沖到組織上方,讓它流下沖洗組織;

2)烤片時(shí)間不夠,或溫度不夠,可以適當(dāng)延長(zhǎng)烤片時(shí)間和提高烤片溫度;

3)組織切的不好,切片機(jī)的問(wèn)題例如比較老的舊的機(jī)器切的厚或者不均勻,或者切片者手法不好等;

4)操作的時(shí)候甩的太猛了,有脫片嫌疑的片子要不甩或輕輕甩,用衛(wèi)生紙從邊緣上慢慢吸水;

5)展片沒(méi)有展開(kāi),撈片時(shí)有氣泡;

6)用高溫修復(fù)時(shí),溫度驟冷也可能引起。用含有多聚賴(lài)氨酸的玻片有助于粘附,索萊寶提供了多聚賴(lài)氨酸粘附載玻片。

 

組織切片為什么產(chǎn)生非特異性染色?

1)標(biāo)本染色過(guò)程中干片會(huì)導(dǎo)致非特異性著色;

2)PBS沖洗不充分,殘留抗體會(huì)增強(qiáng)著色,應(yīng)注重洗滌過(guò)程;

3)抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)、抗體濃度高也易增加背景著色。這可通過(guò)縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來(lái)控制。使用索萊寶推薦的稀釋比例對(duì)抗體進(jìn)行稀釋。多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,也可以試用索萊寶的單克隆抗體;

4)內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細(xì)胞多的組織),需要通過(guò)延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色; 

5)非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過(guò)延長(zhǎng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來(lái)加強(qiáng)封閉效果; 

6)DAB孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或濃度過(guò)高。

 

為什么免疫組化染色呈陰性結(jié)果?

 

 

1)抗體濃度和質(zhì)量問(wèn)題以及抗體來(lái)源選擇錯(cuò)誤;

2)抗原修復(fù)不全。若微波效果不佳,還可高壓修復(fù);

3)組織切片本身這種抗原含量低;

4)血清封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng);

5)DAB孵育時(shí)間過(guò)短;

6)細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng);

7)建議先做個(gè)陽(yáng)性對(duì)照片,排除抗體等外的方法問(wèn)題。

 

為什么背景高?

 

1)考慮一抗?jié)舛雀撸?/span>

2)調(diào)整DAB孵育時(shí)間;

3)也要考慮血清封閉時(shí)間是否過(guò)短;

4)適當(dāng)增加抗體孵育后的浸洗次數(shù)和延長(zhǎng)浸洗時(shí)間等。

 

邊緣效應(yīng)怎么辦?

 

 

1)組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中。解決辦法:制備的膠片(APES或多聚賴(lài)氨酸),切出盡量薄的組織切片,不厚于4微米,組織的前期處理應(yīng)規(guī)范,盡量避免選用壞死較多的組織;

2)切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織,邊緣的試劑容易先變干,濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法:試劑要充分覆蓋組織,應(yīng)超出組織邊緣2mm。用組化筆畫(huà)圈時(shí),為了避免油劑的影響,畫(huà)圈應(yīng)距組織邊緣3-4mm。

 

DAB顯色后發(fā)現(xiàn)切片著色不均勻?

1)切出的片子厚度本身可能就不一樣,切出一片厚,一片薄,這樣可能造成著色深淺不一;

2)有可能是你的顯色液底物加到片子上后沒(méi)有搖勻,造成局部底物濃度不一致,所以加完顯色液后要將片子來(lái)回左右晃動(dòng)幾下,使片子上所有區(qū)域的底物濃度一致;

3)如果你的片子是中間的染色深,靠近邊上的淺,那有可能是你組化筆圈畫(huà)的太小,顯色液覆蓋的面積不過(guò)大而產(chǎn)生了邊緣效應(yīng)。外側(cè)的組織片要離顯色液外緣0.5cm。

  免疫組化(IHC)的TIPS  

 

 

  1. 組織固定越新鮮越好,盡快固定,多選用4%多聚甲醛固定液。但對(duì)于不同的組織和抗原,可選用不同的固定液;

  2. 組織脫水和透明時(shí)間不能太長(zhǎng),否則在切片時(shí)容易碎片,切不完整;

  3. 切片展片時(shí)有些組織在切片后難以在水中展開(kāi),這時(shí)可適當(dāng)?shù)卦谒屑尤霂椎我掖迹?/span>

  4. 烤片:要控制烤片的溫度和時(shí)間,溫度太高或時(shí)間太長(zhǎng),抗原容易丟失??酒臅r(shí)候把切片呈60°角斜立,切片和載玻片之間的水滴或氣泡會(huì)從邊緣滑出,減少對(duì)切片的損壞;

  5. 蠟塊及切片的保存:要在4℃保存;

  6. 脫片問(wèn)題:Poly-L-Lysine(多聚賴(lài)氨酸)為目前免疫組化染色工作中常用的一種防脫片劑,6ml的多聚賴(lài)氨酸溶液可按1:10稀釋成60ml的工作液,適合于需要酶消化、微波、高溫高壓的防脫片處理。如不行,可用雙重處理(APES和Poly-L-Lysine)的切片。在以上兩種條件都行不通的情況下,可用如下方法:切片在脫蠟前,放在APES 1:50丙酮溶液中浸泡3min,晾干,即可進(jìn)行下一步;

  7. 滅活內(nèi)源性酶:HRP系統(tǒng):3%雙氧水滅活;AP系統(tǒng):3%HAc滅活;

  8. 暴露抗原:對(duì)于不同的組織,不同的抗原,不同的抗體,所采用的方法應(yīng)不一樣,可進(jìn)行熱修復(fù)、胰酶消化、既不修復(fù)也不消化。膠原還可以用胃蛋白酶消化等;

  9. 封閉:在山羊血清封閉,非特異性染色仍然較強(qiáng)時(shí),可延長(zhǎng)封閉時(shí)間或用濃縮血清封閉;

  10. 抗體稀釋?zhuān)簯?yīng)遵循“現(xiàn)用現(xiàn)配”的原則,對(duì)于PBS稀釋的抗體一定要當(dāng)天使用;

  11. 背景高:在抗體濃度、反應(yīng)時(shí)間、反應(yīng)溫度等合適的條件下,如果背景依舊高,可采用含1‰ Tween20的PBS洗,特別是在顯色之前要多洗;

  12. 顯色:DAB顯色時(shí)間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時(shí)間,到出現(xiàn)淺棕色本底時(shí)即可沖洗;若很短時(shí)間就出現(xiàn)背景很深,還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長(zhǎng)封閉時(shí)間;

  13. 返藍(lán):在蘇木素復(fù)染后,可用堿性緩沖液(如PBS)或Na2HPO4的飽和溶液返藍(lán);

  14. 整個(gè)操作過(guò)程中,切片千萬(wàn)不能干燥,否則會(huì)有非特異性染色。

?

  此刻,相信您不會(huì)做不好啦  

 

  可是,但是,還是做不好怎么辦  

 

  索萊寶專(zhuān)業(yè)IHC檢測(cè)服務(wù)助力您的科研   

 

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